La kanamicina ELISA Test Kit del ™ de REAGEN es un immunoensayo competitivo de la enzima para el análisis cuantitativo de la kanamicina en carne/hígado/riñón, lysate de la célula, orina, suero y leche.
Altos recuperación (el >80%), rápidas (10-40 minutos), y métodos rentables de la extracción.
El límite de detección es 0,2 ng/g.
Alta reproductibilidad.
Un análisis rápido de ELISA (menos de 1 hora sin importar el número de muestras).
El método se basa en un análisis colorimétrico competitivo de ELISA. La kanamicina-BSA ha estado cubierta en los pozos de la placa. Durante el análisis, la muestra y el anticuerpo de la kanamicina (anticuerpo #1) y HRP-conjugación (el anticuerpo HRP-conjugado #2) se añade a los pozos para la incubación. Si el residuo de la kanamicina está presente en la muestra, competirá con la kanamicina en los pozos de la placa para el anticuerpo de la kanamicina, el anticuerpo secundario, marcado con etiqueta con una enzima de la peroxidasa, las blancos el anticuerpo primario que es complexed a la droga cubierta en los pozos de la placa. La intensidad resultante del color, después de la adición del substrato de HRP (TMB), tiene una relación inversa con la concentración del residuo de la kanamicina en la muestra.
La kanamicina ELISA Test Kit del ™ de REAGEN tiene la capacidad para 96 determinaciones o probar de 42 muestras dos veces (si se asume que 12 pozos para los estándares). Vuelva cualquier microwells inusitado al bolso de la hoja y reséllelo con el desecante proporcionado en el paquete original. Almacene el equipo en 2-8°C *. La vida útil es 12 meses en que el equipo se almacena correctamente.
Kit Contents | Cantidad | Almacenamiento |
placa Kanamicina-revestida | bien placa 1 x 96 | 2-8°C |
Estándares de la kanamicina Control negativo (tubo blanco del CASQUILLO) 0,2 ng/mL (tubo amarillo del CASQUILLO) 0,6 ng/mL (tubo anaranjado del CASQUILLO) 1,8 ng/mL (tubo rosado del casquillo) 5,4 ng/mL (tubo púrpura del casquillo) 16,2 ng/mL (tubo del casquillo azul) 1000 ng/mL (tubo del casquillo que clava, opcional, rojo) |
1mL 1mL 1mL 1mL 1mL 1mL 1mL |
2-8℃
|
Kanamicina Ab#1 | 6.0mL | 2-8℃ |
Ab#2 HRP-conjugado | 6.0mL | |
diluyente 10×Sample | 15 ml | |
Solución del lavado 20× | 28mL | |
Almacenador intermediario de la parada | 12mL | |
Substrato de TMB | 12mL | |
almacenador intermediario exterior 10×Sample (opcional) | 15mL | |
Almacenador intermediario de la balanza de la muestra | 2 ml |
Si usted no está planeando utilizar el equipo para más de 1 mes, la acción estándar de la kanamicina de la tienda, anticuerpo #1and de la kanamicina HRP-conjugó el anticuerpo #2 en -20°C o en un congelador.
Tipo de la muestra | Límite de detección (ng/g o ppb) |
Pescados/camarón/carne/hígado/riñón | 8 |
Célula Lysate | 2 |
Orina /Serum | 5 |
Leche | 2 |
Analitos | Reactividad cruzada (%) |
Kanamicina | 100 |
Estreptomicina | < 0=""> |
Dihidroestreptomicina | < 0=""> |
Neomicina | < 0=""> |
Lector de la placa de microtítulo (450 nanómetro)
Mezclador del tejido (e.g. homogeneizador del amo del tejido de Omni)
Mezclador del vórtice (e.g. mezclador de Genie Vortex de VWR)
pipetas 10, 20, 100 y 1000 de la UL
Pipeta de varios canales: 50-300 UL (opcional)
Esté seguro que las muestras están almacenadas correctamente. En general, las muestras se deben refrigerar en 2-4°C por no más que 1-2 días. Muestras del helada a un mínimo de -20°C si necesitan ser almacenadas por un período más largo. Las muestras congeladas se pueden deshelar en los temps del sitio (20 – 25°C/68 – 77°F) o en un refrigerador antes de usar.
Tome UL 100 del lysate de la célula, añada UL 900 del almacenador intermediario del diluyente 1×Sample, mézclese bien.
Centrifugadora por 5 minutos en 4000 x G.
Tome UL 50 del sobrenadante por el pozo para el análisis.
Nota: Factor del dilución: 10.
A 1,0 g de la muestra homogeneizada, añada 4.0mL del almacenador intermediario exterior 1×Sample,
Vórtice la muestra por los minutos 1 con el mezclador del vórtice.
Centrifugue la muestra por 5 minutos en 4.000 x G.
Transfiera cuidadosamente 200uL de la capa superior a un nuevo tubo, añada 1.375mldediluyentede lamuestra1Xy25uLdelalmacenador intermediariode labalanzade lamuestra, vórticepor30segundos.
Utilice 50uL por el pozo para el análisis.
Nota: Factor del dilución: 40.
Tome 50uL de la orina o la muestra del suero, añade 1,2 ml de diluyente de la muestra 1X, se mezcla bien.
Centrifugadora por 5 minutos en 4.000 x G.
Tome 50uL del sobrenadante por el pozo para el análisis.
Nota: Factor del dilución: 25.
Nota: Factor del dilución: 10
IMPORTANTE: Todos los reactivo se deben traer hasta temperatura ambiente antes de usar (1 – 2 horas en 20 – 25°C/68 – el°F) 77; Asegúrese de que usted sección leída de las “advertencias y de las precauciones” en soluciones de la página 3. sea preparado apenas antes de prueba de ELISA. Todos los reactivo deben ser mezclados suavemente invirtiendo o remolinando antes de uso. Prepare los volúmenes que son necesarios para el número de pozos que son corridos. No vuelva los reactivo a los tubos/a las botellas comunes originales. Usando depósitos disponibles cuando la manipulación de los reactivo puede minimizar el riesgo de contaminación y se recomienda.
Mezcla 1 volumen de la solución del lavado 20X con 19 volúmenes de agua destilada.
Etiquete las tiras individuales que serán utilizados y los reactivo de la parte alícuota como el ejemplo siguiente:
Componente | Volumen por la reacción | 24 reacciones |
Anticuerpo #1 de la kanamicina | 50uL | 1.2mL |
Ab HRP-conjugado #2 | 50uL | 1.2mL |
solución del lavado 1X | 1,0 ml | 24mL |
Almacenador intermediario de la parada | UL 100 | 2,4 ml |
Substrato de TMB | UL 100 | 2,4 ml |
Añada UL 50 de los estándares de cada kanamicina dos veces en diversos pozos (añada los estándares para platear solamente en el orden de la concentración baja a la alta concentración).
Añada UL 50 de cada muestra dos veces en diversos pozos de la muestra.
Añada UL 50 UL HRP-Conjugar Ab#2 a cada pozo y 50 del anticuerpo #1 de la kanamicina a cada pozo. Mézclese bien suavemente oscilando la placa manualmente para 30s.
Incube la placa por 30 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F). (Evite la luz del sol directa y los tops fríos del banco durante la incubación. Recubrimiento de la placa de microtítulo mientras que se recomienda la incubación).
Lave la placa 4 veces con UL 250 de la solución del lavado 1X. Después del lavado pasado, invierta la placa y golpee ligeramente suavemente el seco de placa en las toallas de papel (realice el paso siguiente inmediatamente después de lavados de la placa. No permita que la placa ventile seco entre los pasos de funcionamiento).
Añada UL 100 del substrato de TMB. Mida el tiempo de la reacción inmediatamente después de añadir el substrato. Mezcle la solución suavemente oscilando la placa manualmente para 30s mientras que incuba (no ponga ningún substrato de nuevo al envase original para evitar ninguna contaminación potencial. Cualquier solución del substrato que exhibe la coloración es indicativa del deterioro y debe ser desechada. Recubrimiento de la placa de microtítulo mientras que se recomienda la incubación).
Después de incubar por 15 minutos en la temperatura ambiente (el°F) 20 – 25°C/68 – 77, añade UL 100 del almacenador intermediario de la parada para parar la reacción enzimática.
Lea la placa que sigue cuanto antes la adición de almacenador intermediario de la parada en un lector de la placa con la longitud de onda de 450 nanómetro (antes de la lectura, utilice un trapo sin pelusa en la parte inferior de la placa para asegurarse que ninguna humedad o huellas dactilares interfieren con las lecturas).
Una curva estándar puede ser construida trazando la absorción relativa mala (%) obtuvo de cada estándar de referencia contra su concentración en ng/mL en una curva logarítmica.
Absorción relativa (%) = estándar cero o muestra x 100 de la absorción
Utilice los valores relativos malos de la absorción para cada muestra para determinar la concentración correspondiente de la droga probada en ng/mL de la curva estándar.
La figura siguiente es una curva estándar del cloranfenicol típico.
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