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Equipo de la prueba de Furaltadone (AMOZ) ELISA para el camarón/la carne/Hepar de la miel de la detección
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Equipo de la prueba de Furaltadone (AMOZ) ELISA para el camarón/la carne/Hepar de la miel de la detección

Lugar de origen ESTADOS UNIDOS
Nombre de la marca REAGEN
Certificación FAPAS
Número de modelo RND99012
Detalles del producto
tipo:
reactivo
Espécimen:
camarón /Meat/Hepar de la miel
Paquete:
embalaje del color
Vida útil:
Un año
Palabras claves:
Equipo de la prueba del elisa de Furaltadone, equipo del elisa de AMOZ, equipo de prueba de Furaltad
Sensibilidad:
0.05ng/ml
Alta luz: 

equipos de prueba del residuo de la droga

,

equipo del elisa del residuo de la droga

Condiciones de pago y envío
Cantidad de orden mínima
5 equipos
Precio
Negotiable
Detalles de empaquetado
de embalaje de color
Tiempo de entrega
5-7 días
Condiciones de pago
T/T
Capacidad de la fuente
100 equipos por mes
Descripción del producto

Furaltadone (AMOZ) ELISA Test Kit

Descripción de producto

El ™Furaltadone de REAGEN (AMOZ) ELISA Test Kit proporciona un immunoensayo competitivo de la enzima para el análisis cuantitativo del furaltadone en los pescados, camarón, carne (pollo, carne de vaca, cerdo y hepar), huevos, piedra de afilar.

  • Recuperación rápida (4 horas), alta (80 - 105%), y métodos rentables de la extracción para las diversas muestras.

  • Alta sensibilidad (0,05 ng/g o ppb) y límite de detección bajo (0,1 ng/g o ppb) para las diversas muestras.

  • Alta reproductibilidad.

  • Un análisis rápido de ELISA (menos de 1 hora sin importar el número de muestras).

 

Descripción del procedimiento

El método se basa en un análisis colorimétrico competitivo de ELISA. El AMOZ-BSA ha estado cubierto en los pozos de la placa. Durante el análisis, la muestra y el anticuerpo de AMOZ se añaden junto con el anticuerpo secundario, marcado con etiqueta con una enzima de la peroxidasa. Si el residuo de AMOZ está presente en la muestra, competirá para el anticuerpo de AMOZ, de tal modo previniendo el anticuerpo del atascamiento al AMOZ-BSA atado al pozo. La intensidad resultante del color, después de la adición del substrato de HRP (TMB), tiene una relación inversa con la concentración del residuo de AMOZ en la muestra.

Equipo de la prueba de Furaltadone (AMOZ) ELISA para el camarón/la carne/Hepar de la miel de la detección 0

Kit Contents, almacenamiento y vida útil

El ™Furaltadone de REAGEN (AMOZ) ELISA Test Kit tiene la capacidad para 96 determinaciones o probar de 42 muestras dos veces (si se asume que 12 pozos para los estándares). Vuelva cualquier microwells inusitado al bolso de la hoja y reséllelo con el desecante proporcionado en el paquete original. Almacene el equipo en 2-8°C*. La vida útil es 12 meses en que el equipo se almacena correctamente.

 

Kit Contents

Cantidad

Almacenamiento

AMOZ - placa revestida

bien placa 1 x 96 (8 tiras del X12 de los pozos)

2-8°C

Estándares de AMOZ:

Control negativo (tubo blanco del casquillo)

0,0 5ng/mL (tubo amarillo del casquillo)

0.15ng/mL (tubo anaranjado del casquillo)

0,45 ng/mL (tubo rosado del casquillo)

1,35 ng/mL (tubo púrpura del casquillo)

4,05 ng/mL (tubo del casquillo azul)

10 ng/mL (tubo del casquillo que clava, opcional, rojo)

 

1,5 ml

1,5 ml

1,5 ml

1,5 ml

1,5 ml

1,5 ml

1,5 ml

2-8°C

 

 

 

 

2-8°C

Anticuerpo de AMOZ (Antibody#1)

4 ml

 

Anticuerpo HRP-conjugado #2

6 ml

2-8°C

almacenador intermediario de la extracción de la muestra 10X

25 ml

solución del lavado 20X

28 ml

Almacenador intermediario de la parada

20 ml

Substrato de TMB

12 ml

50 milímetros 2-Nitrobenzaldehyde

2,0 ml

 

* si usted no está planeando utilizar el equipo para más de 1 mes, la tienda Antibody#1 y el anticuerpo HRP-conjugado #2 en -20°C o en un congelador.

 

 

Sensibilidad (límite de detección)

 

Tipo de la muestra

Límite de detección (ng/g o ppb)

Pescados/camarón

0,1

Carne (pollo, carne de vaca, cerdo y hepar)

0,1

Huevo/poder del huevo

0,1

Miel

0,1

 

Especificidad (reactividad cruzada)

Analitos

Reactividad cruzada (%)

AMOZ

100

AOZ

<0>

AHD

< 0="">

SEM

< 0="">

 

Materiales requeridos no proporcionados el equipo

lector de la placa 1.Microtiter (450 nanómetro)

2.Incubator

mezclador 3.Tissue (e.g. homogeneizador de Omni TissueMaster)

gas del evaporador 4.Rotary o del nitrógeno

mezclador 5.Vortex (e.g. mezclador del vórtice de Gneie de VWR)

pipetas de 6,10, 20, 100 y 1000 ml

pipeta 7.Multi-channel: 50-300 ml (de opcional)

acetato 8.Ethyl

9.0.1 M K2HPO4

10.n-Hexane (o n-heptano)

NaOH del 11.1M

ÁCIDO CLORHÍDRICO del 12.1M

 

Advertencias y precauciones

  • Los estándares contienen Furaltadone. Manija con cuidado particular.

  • No utilice el equipo más allá de la fecha de caducidad.

  • No entremezcle los reactivo de diversos equipos o las porciones a excepción de componentes con el mismo número de parte dentro de sus fechas de caducidad. LOS ANTICUERPOS Y LAS PLACAS SON EQUIPO Y LOT-SPECIFIC.

  • Intente mantener una temperatura del laboratorio de 20°-25°C (68°-77°F). El funcionamiento Avoid prueba bajo o cerca de salidas de aire, pues éste puede causar el enfriamiento, la calefacción y/o la evaporación excesivos. También, no funcione con los análisis en luz del sol directa, como esto puede causar calor excesivo y la evaporación. Los tops fríos del banco deben ser evitados colocando varias capas de toalla de papel o de un poco de otro material de aislamiento debajo de las placas del análisis durante la incubación.

  • Asegúrese de que usted con esté destilando solamente o agua desionizada puesto que la calidad del agua es muy importante.

  • Al medir con una pipeta muestras o los reactivo en una placa de microtítulo vacía, ponga las extremidades de la pipeta en la esquina más baja del pozo, haciendo el contacto con el plástico.

  • Las incubaciones de las placas del análisis se deben medir el tiempo tan exacto como sea posible. Sea constante al añadir estándares a la placa del análisis. Primero y después añada sus estándares sus muestras.

  • Añada los estándares para platear solamente en el orden de la concentración baja a la alta concentración pues esto minimizará el riesgo de comprometer la curva estándar.

  • Refrigere siempre las placas en bolsos sellados con un desecante para mantener estabilidad. Evite la condensación forme en las placas permitiendo que equilibren a la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F) mientras que en el empaquetado.

 

PREPARACIÓN DE LA MUESTRA

Esté seguro que las muestras están almacenadas correctamente. En general, las muestras se deben refrigerar en el forno 2-4°C más de 1-2 días. Muestras del helada a un mínimo de -20°C si necesitan ser almacenadas por un período más largo. Las muestras congeladas se pueden deshelar en los temps del sitio (20 – 25°C/68 – 77°F) o en un refrigerador antes de usar.

 

Pescados

  • Mezcla 1 g de la muestra homogeneizada con 0,5 ml de almacenador intermediario de la extracción de la muestra 1X, 3,5 ml de agua destilada, 0,5 ml de 1 M HCl y 20 ml de 50 milímetros 2-Nitrobenzaldehyde vortexing por 30 segundos.

  • Incube en 50°C -55°C por 3 horas. Vórtice la muestra por 5 segundos cada hora durante la incubación.

  • Añada 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de NaOH de 1 M y 6 ml de acetato de etilo, vórtice por 2 minutos.

  • Centrifugadora en 4.000 x g por 5 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C).

  • ¡Transferencia 3 ml del sobrenadante del acetato de etilo (correspondiente a 0,5 g de la muestra original) en un nuevo frasco (F evita la capa acuosa más baja! Si está contaminado con una capa más baja, centrifugue el acetato de etilo extraído por 5 minutos en 4.000 x g otra vez y consiga la capa orgánica superior). En caso de que sucediera la emulsión y la capa superior del acetato de etilo era menos de 3 ml, incube la muestra en el baño de agua por 3 minutos en 85°C.Use un evaporador rotatorio para secar la muestra en un baño de agua 60-70°C bajo presión reducida. Alternativamente, la muestra puede ser secada soplando el gas del nitrógeno en un baño de agua 60-70°C.

  • Disuelva el residuo secado en 1 ml de n-hexano (o de n-heptano).

  • Añada 1 ml de 1 almacenador intermediario de la extracción de la muestra deX, vórtice la muestra por 2 minutos.

  • Centrifugue la muestra en 4.000 x g por 10 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F).

  • Utilice 50mL de la capa acuosa más baja por el pozo para el análisis.

Nota: Factor del dilución: 2. Para evitar el alto fondo, se recomienda que una muestra en blanco solvente esté preparada paralelamente, empezando por la reducción de 3 ml de acetato de etilo al estado seco y continúa con el procedimiento de la extracción del resto. Reste el resultado del control solvente de los resultados de la muestra.

 

Camarón /Meat/Hepar

  • Mezcla 1 g de la muestra homogeneizada con el almacenador intermediario de la extracción de la muestra de 0,5 ml 1X, 3,5 ml de agua destilada, 0,5 ml de 1 M HCl y 20 ml de 50 milímetros 2-Nitrobenzaldehyde vortexing por 30 segundos.

  • Incube at50°C -55°C por 3 horas. Vórtice la muestra por 5 segundos cada hora durante la incubación.

  • Añada 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de NaOH de 1 M y 6 ml de acetato de etilo, vórtice por 5 minutos.

  • Centrifugadora en 4.000 x g por 5 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F).

  • ¡Transferencia 3,0 ml del sobrenadante del acetato de etilo (correspondiente a 0,5 g de la muestra original del huevo) en un nuevo frasco (F evita la capa acuosa más baja! Si está contaminado con una capa más baja, centrifugue el acetato de etilo extraído por 5 minutos en 4.000 x g otra vez y consiga la capa orgánica superior). Utilice un evaporador rotatorio para secar la muestra en un baño de agua 60-70°C bajo presión reducida. Alternativamente, la muestra puede ser secada soplando el gas del nitrógeno en un baño de agua 60-70°C.

  • Disuelva el residuo secado en 1 ml de n-hexano (o de n-heptano).

  • Añada 1 ml de almacenador intermediario y de vórtice de la extracción de la muestra 1X la muestra por 2 minutos.

  • Centrifugue la muestra en 4.000 x g por 10 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F).

  • Utilice 50 ml de la capa acuosa más baja por el pozo para el análisis.

Nota: Factor del dilución: 2. Para evitar el alto fondo, se recomienda que una muestra en blanco solvente esté preparada paralelamente, empezando por la reducción de 3 ml de acetato de etilo al estado seco y continúa con el procedimiento del resto. Reste el resultado del control solvente de los resultados de la muestra.

 

Huevo

  • Mezcla 1 g de la muestra del huevo con 0,5 ml de almacenador intermediario de la extracción de la muestra 1X, 3,5 ml de agua destilada, 0,5 ml de 1 M HCl y 20 ml de 50 milímetros 2-Nitrobenzaldehyde vortexing por 2 minutos.

  • Incube en 50°C -55°C por 3 horas. Vórtice la muestra por 5 segundos cada hora durante la incubación.

  • Añada 5mL de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de NaOH de 1 M y 6 ml del acetato de etilo, vórtice 5 minutos a la velocidad máxima.

  • Centrifugadora en 4.000 x g por 10 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F).

  • ¡Transferencia 3,0 ml del sobrenadante del acetato de etilo (correspondiente a 0,5 g de la muestra original de la miel) en un nuevo frasco (F evita la capa acuosa más baja! Si está contaminado con una capa más baja, centrifugue el acetato de etilo extraído por 5 minutos en 4.000 x g otra vez y consiga la capa orgánica superior). Utilice un evaporador rotatorio para secar la muestra en un baño de agua 60-70°C bajo presión reducida. Alternativamente, la muestra puede ser secada soplando el gas del nitrógeno en un baño de agua 60-70°C.

  • Disuelva el residuo secado en 1 ml de n-hexano (o de n-heptano).

  • Añada 1 ml de 1 almacenador intermediario y vórtice de la extracción de la muestra deX por 2 minutos.

  • Centrifugue la muestra en 4.000 x g por 10 minutos en la temperatura ambiente (20 – 25°C/68 – 77°F).

  • Use50 ml de la capa acuosa más baja para el análisis.

Nota: Factor del dilución: 2. (1) después de la evaporación del extracto del acetato de etilo, el residuo resultante no se disuelve totalmente. Sin embargo, la tarifa de recuperación no será comprometida (el >80%). (2) para esta preparación, recomendamos el usar del estándar 0,5 ng/g o del ppb como el valor cortado para las muestras positivas puesto que las muestras negativas podrían mostrar considerables movimientos propios (en algunos casos entre los estándares 0,05 ng/g y 0,15 ng/g).

 

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