Furaltadona (AMOZ) Kit de prueba ELISA para la detección de miel Camarón / Carne / Hepar

Kit de pruebas de ELISA de furaltadona (AMOZ)

Descripción del producto

En el caso de los^{- ¿ Qué?}Furaltadona ((AMOZ) ELISA Test Kit proporciona un inmunoensayo enzimático competitivo para el análisis cuantitativo de furaltadona en pescado, camarón, carne (pollo, carne de res, carne de cerdo y hepar), huevos, miel.

• Métodos de extracción rápidos (4 horas), de alta recuperación (80-105%) y rentables para varias muestras.

• La sensibilidad alta (0,05 ng/g o ppb) y el límite de detección bajo (0,1 ng/g o ppb) para varias muestras.

• Alta reproducibilidad.

• Un análisis rápido de ELISA (menos de 1 hora independientemente del número de muestras).

Resumen del procedimiento

El método se basa en un ensayo ELISA colorimétrico competitivo.La muestra y el anticuerpo AMOZ se agregan junto con el anticuerpo secundario.Si el residuo de AMOZ está presente en la muestra, competirá por el anticuerpo AMOZ,evitando así que el anticuerpo se une al AMOZ-BSA unido al pozoLa intensidad de color resultante, después de la adición del sustrato HRP (TMB), tiene una relación inversa con la concentración de residuos de AMOZ en la muestra.

Contenido del kit, almacenamiento y vida útil

En el caso de los^{- ¿ Qué?}El kit de pruebas ELISA de furaltadona (AMOZ) tiene capacidad para 96 determinaciones o pruebas de 42 muestras en duplicado (suponiendo 12 pozos para estándares).Devuelva todos los microcuencos no utilizados a la bolsa de papel y vuelva a sellarlos con el desecante que figura en el embalaje original.. Conservar el kit a 2-8°C.* La vida útil del kit es de 12 meses cuando se almacena correctamente.

* Si no planea utilizar el kit durante más de 1 mes, guarde el anticuerpo #1 y el anticuerpo HRP-conjugado #2 a -20°C o en congelador.

Sensitividad (límite de detección)

Especificidad (reactividad cruzada)

Materiales necesarios no incluidos en el kit

1.Lector de placas de microtiter (450 nm)

2.Incubadora

3. Mezclador de tejidos (por ejemplo, Omni TissueMaster Homogenizer)

4Evaporador rotativo o gas de nitrógeno

5. Mezclador de vórtices (por ejemplo, mezclador de vórtices Gneie de VWR)

6.10, 20, 100 y 1000 ml de pipetas

7.Pipeta multicanal: 50 a 300 ml (opcional)

8Acetato de etilo

9.0.1 M K2HPO4

10.n-hexano (o n-heptano)

11.1M NaOH

12.1M HCL

Advertencias y precauciones

• Los estándares contienen furaltadona.

• No utilice el kit después de la fecha de caducidad.

• No se mezclen reactivos de diferentes kits o lotes, excepto para componentes con el mismo número de pieza dentro de sus fechas de caducidad.

• Trate de mantener una temperatura de laboratorio de 20° 25° C (68° 77° F). Evite ejecutar ensayos bajo o cerca de las aberturas de aire, ya que esto puede causar enfriamiento, calentamiento y/o evaporación excesivos.no ejecutar ensayos a la luz solar directa, ya que esto puede causar calor excesivo y evaporación.Durante la incubación, se deben evitar los bancos fríos colocando varias capas de toalla de papel o algún otro material aislante debajo de las placas de ensayo..

• Asegúrese de utilizar sólo agua destilada o desionizada, ya que la calidad del agua es muy importante.

• Cuando las muestras o los reactivos se coloquen por pipeta en una placa de microtiter vacía, coloque las puntas de la pipeta en la esquina inferior del pozo, haciendo contacto con el plástico.

• Las incubadoras de las placas de ensayo deben ser cronometradas con la mayor precisión posible. Sea coherente al agregar estándares a la placa de ensayo. Agregue sus estándares primero y luego sus muestras.

• Añadir estándares a la placa solo en el orden de baja concentración a alta concentración, ya que esto minimizará el riesgo de comprometer la curva estándar.

• Siempre refrigerar las placas en bolsas selladas con un desecante para mantener su estabilidad.Prevenir la formación de condensación en las placas, dejándolas equilibrarse a temperatura ambiente (20°C / 68°F) mientras están en el embalaje.

Preparación de la muestra

Asegúrese de que las muestras se almacenan correctamente. En general, las muestras deben refrigerarse a 2-4°C durante no más de 1-2 días. Congele las muestras a un mínimo de -20°C si necesitan ser almacenadas durante un período más largo.Las muestras congeladas se pueden descongelar a temperatura ambiente (20 25 ° C / 68 77 ° F) o en refrigerador antes de su uso..

Pescado

• Mezclar 1 g de la muestra homogeneizada con 0,5 ml de tampón de extracción de muestra de 1 X, 3,5 ml de agua destilada, 0,5 ml de 1 M HCl y 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldehído por vórtice durante 30 segundos.

• Incubación a 50°C-55°C durante 3 horas. Vortice de la muestra durante 5 segundos cada hora durante la incubación.

• Se añaden 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH y 6 ml de acetato de etilo, en vórtice durante 2 minutos.

• Centrifugar a 4.000 x g durante 5 minutos a temperatura ambiente (20 °C a 25 °C).

• Transfiera 3 ml del supernatante de acetato de etilo (que corresponde a 0,5 g de la muestra original) a un nuevo vial (F Evite la capa acuosa inferior!centrifugar el acetato de etilo extraído durante 5 minutos a 4En caso de que se produzca la emulsión y la capa superior de acetato de etilo sea inferior a 3 ml, incubar la muestra en un baño de agua durante 3 minutos a 85 °C.Utilice un evaporador rotativo para secar la muestra en un baño de agua de 60 a 70 °C bajo presión reducida.Alternativamente, la muestra puede secarse soplando gas nitrógeno en un baño de agua de 60 a 70 °C.

• Disolver el residuo seco en 1 ml de n-hexano (o n-heptano).

• Añadir 1 ml de1X.Buffer de extracción de muestras, vórtice de la muestra durante 2 minutos.

• Centrifugar la muestra a 4.000 x g durante 10 minutos a temperatura ambiente (20 °C / 68 °F).

• Se utilizarán 50 ml de la capa acuosa inferior por pozo para el ensayo.

Nota:Factor de dilución: 2. Para evitar un fondo elevado, se recomienda preparar en paralelo una muestra en blanco de disolvente.comenzando con la reducción de 3 ml de acetato de etilo hasta secarlos y continuando con el procedimiento de extracción en reposoSe restará el resultado del control con disolvente de los resultados de la muestra.

Camarones/Carne de animales/Hepar

• Mezclar 1 g de la muestra homogeneizada con 0,5 ml de tampón de extracción de muestra 1X, 3,5 ml de agua destilada, 0,5 ml de 1 M HCl y 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldehído por vórtice durante 30 segundos.

• Incubación a 50°C-55°C durante 3 horas. Vortice de la muestra durante 5 segundos cada hora durante la incubación.

• Se añaden 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH y 6 ml de acetato de etilo, en vórtice durante 5 minutos.

• Centrifugar a 4.000 x g durante 5 minutos a temperatura ambiente (20 °C / 68 °F).

• Transfiera 3,0 ml del supernatante de acetato de etilo (que corresponde a 0,5 g de la muestra original de huevo) a un nuevo vial (F Evite la capa acuosa inferior!centrifugar el acetato de etilo extraído durante 5 minutos a 4En el caso de las muestras de la muestra, se utilizará un evaporador rotativo para secar la muestra en un baño de agua de 60 a 70 °C bajo presión reducida.La muestra puede secarse soplando gas nitrógeno en un baño de agua de 60 a 70 °C..

• Disolver el residuo seco en 1 ml de n-hexano (o n-heptano).

• Añadir 1 ml de1XExtracción de muestras tampón y vórtice de la muestra durante 2 minutos.

• Centrifugar la muestra a 4.000 x g durante 10 minutos a temperatura ambiente (20 °C / 68 °F).

• Se utilizarán 50 ml de la capa acuosa inferior por pozo para el ensayo.

Nota: Factor de dilución: 2. Para evitar un fondo elevado, se recomienda preparar en paralelo una muestra en blanco de disolvente.comenzando con la reducción de 3 ml de acetato de etilo hasta secarlos y continuando con el procedimiento de reposoSe restará el resultado del control con disolvente de los resultados de la muestra.

Huevo

• Mezclar 1 g de la muestra de huevo con 0,5 ml de amortiguador de extracción de muestra 1X, 3,5 ml de agua destilada, 0,5 ml de 1 M HCl y 20 ml de 50 mM de 2-nitrobenzaldehído, haciendo vórtices durante 2 minutos.

• Incubación a 50°C-55°C durante 3 horas. Vortice de la muestra durante 5 segundos cada hora durante la incubación.

• Añadir 5 ml de 0,1 M K2HPO4, 0,4 ml de 1 M NaOH y 6 ml de acetato de etilo, vórtice 5 minutos a velocidad máxima.

• Centrifugar a 4.000 x g durante 10 minutos a temperatura ambiente (20 °C / 68 °F).

• Transfiera 3,0 ml del supernatante de acetato de etilo (que corresponde a 0,5 g de la muestra original de miel) a un nuevo vial (F Evite la capa acuosa inferior!centrifugar el acetato de etilo extraído durante 5 minutos a 4En el caso de las muestras de la muestra, se utilizará un evaporador rotativo para secar la muestra en un baño de agua de 60 a 70 °C bajo presión reducida.La muestra puede secarse soplando gas nitrógeno en un baño de agua de 60 a 70 °C..

• Disolver el residuo seco en 1 ml de n-hexano (o n-heptano).

• Añadir 1 ml de1X.Buffer de extracción de muestras y vórtice durante 2 minutos.

• Centrifugar la muestra a 4.000 x g durante 10 minutos a temperatura ambiente (20 °C / 68 °F).

• Se utilizarán 50 ml de la capa acuosa inferior para el ensayo.

Nota: Factor de dilución: 2. (1) Después de la evaporación del extracto de acetato de etilo, el residuo resultante no se disuelve por completo.(2) Para esta preparación, recomendamos utilizar 0,5 ng/g o ppb estándar como valor de corte para las muestras positivas, ya que las muestras negativas podrían mostrar efectos de fondo considerables (en algunos casos entre las normas 0.05 ng/g y.15 ng/g).